我找得一个是500mg的,不知道能不能用?我用的是大鼠胸主动脉
应该不能用，因为做血管环平衡时要给1g左右的前负荷，你用的换能器量程是0.5g 的，超出其最大范围，况且在记录血管收缩时其张力也能超过0.5g , 应选5g至10g的换能器就可以了
不懂了现在,上次一位网上的朋友跟我说是张力传感器要求至少100mg,后来我问了实验室的老师,她说如果前负荷是1~2g的话,不可能要求这么精确的换能器,搞不懂了,做过大鼠主动脉环的朋友们帮帮我啊
本人做过血管环其实最好用螺旋环的，平衡时需要1g左右的前负荷，10克的换能器是比较好用的，5克的换能器确实是比较精确的，但人为操作很容易超过它的量程，很容易坏掉的。
螺旋环我做过一次,作起来太辛苦了.那我找得500mg的是什么意思啊?那老师说是美国产的,感觉像个天平,也就是说我得找个5~10g的换能器,刚跟实验室的老师说是100mg,他说做不到,就把我推给别的老师了,郁闷.
能不能把你的具体步骤发给我,
我的联系方法cucumberyo@163.com,QQ是75251907
你说的那种传感器应该是等张传感器，天平的一头接标本，另一头是一个可以动的砝码，移动砝码可确定前负荷，你的传感器的最大前负荷是500mg。等张换能器在记录仪上反映的是标本的长度变化，即位移（mm），而一般的张力换能器（等长换能器）反映的是标本的张力变化（mg、g），其他有关信息已PM给你。
用这种500mg等张传感器能不能做大鼠血管环啊？
可以，不知道你的配套记录仪是什么牌号的。等张换能器的使用是这样的：将砝码移到0刻度处，天平杠杆的另一头接上悬吊标本的丝线，调节传感器上下的位置，使天平两侧杠杆目测基本水平，将砝码调到你需要的前负荷处，比如500mg。至于调零和定标，你只能好好研究一下说明书了，因为，与张力换能器不同，不同牌号的等张换能器的调零、定标方法可能不一样。注意，等张换能器反映的是标本的长度变化，所以单位是mm。一般来说，等张换能器反映的标本舒缩状况，比张力换能器更接近生理状况，对于越细小的标本，比如小动脉、输尿管、输精管等等，这种优越性越突出。以前，一些张力换能器测不出的标本，等长换能器都能测出，但由于科技的发展，更灵敏的张力换能器出现，加上等张换能器使用比较麻烦，价格昂贵等因素，使用者越来越少。当然，新买高敏张力换能器有接插口能否与你的记录仪吻合，经费问题，时间问题 等等，你有等张换能器，不妨一试。
500mg的换能器比1g的换能器更灵敏在记录仪更能反央血管微小的活动状态，不过连接时注意动作要轻巧、调零调平衡时也要轻，平衡时也用500mg砝码，平衡时间稍长一些，作标本挂标本联接熟练后作起来很爽的。试验就是这样开始问题特多，作一段时间后就特别顺，作到劲头上了又作完了。
呜呜。。，老板很少问课题的问题，上次上门诊他提醒我不要超出预算，我都快绝望了，试验方法一个也不成熟，还没足够的经费，我想问一下如果不作我要测得酶的基因表达（原来准备作RT-PCR）,改作活性测定可不可以？我只是硕士，做的这么辛苦，想哭
我准备了一周时间,做了两次.没有成功.感觉就是血管好像没活性似的.问题很多,如下:
1我取下的血管放在冰水克氏液中,分离周围结缔组织的时候通的氧气,但总觉得是不是氧气不够,因为就是在平皿上放一管子通氧气,不知道这一步对不对?有别的方法吗?
2分离的血管是什么颜色?我分离的血管技术差,结缔组织太多,等我分离干净后,感觉是白色的有点透明,总觉得颜色太透明了,会不会分离过度了
3分离大鼠主动脉血管有什么技巧没?一开胸我就很紧张,生怕分离太慢血管没活性了
当然还是有一点收获就是做成7字形很方便,上面那个可以做成竖横折---不知道怎没表达,血管就不会移动了.用作介入的导丝韧性很好,也很光滑.
各位帮帮我吧,我分离血管这步实在是通不过阿
从你的步骤上看，应该没什么问题。标本放在近0°C的冰箱保存几小时还是有活性的。有几点供参考：
1.主动脉应该没有多少结缔组织，不必过于强求分离得多干净，因为药物的作用于血管内膜，因此，内膜不能有损伤，比如穿钩子时的划伤，即所谓“血管内皮的完整性”。
2.以最快的速度取下标本，投入冰克氏液漂洗，我想这个过程不到30s吧。
3.前负荷0.5~1g，37°C平衡1h。
4.克氏液应预先通氧1h以上。
5.标本平衡好后，浴槽内滴十万分之一的去甲肾上腺素数滴，标本应该出现收缩。这样的标本应该能使用几小时都有良好的活性。
标本保存的时候是要氧和的克氏液,我是用的两根管子一个通气一根排气,再放到冰箱里不知道可不可以?
放到冰克氏液血管就安全了吗?预先通氧是什么意思,毕竟分离血管要在平皿上,通一个小时的氧难道有用吗?我总觉得一个小管子通氧气,会不会造成缺氧血管没活性啊?
我今天做了一只,还是没有图形,仪器感觉还可以,灵敏度挺高的,总觉得问题还是出在血管本身上
1.预先通氧就是在放克时液的容器里通氧，使溶液中的氧饱和度增加。
2.放冰箱保存的标本不一定要在溶液中通氧。
3.分离标本时尽量避免用手拿。
4.最好通95%O2＋5%CO2，但气体价格较贵；80年代《云南医学院学报》有一篇文献，介绍用纯氧通气的克氏液配方，你可参考一下。
5.勤思多做。
谢谢.我已经决定停一下请教一下别人了,做的郁闷,但总会找到那个纰漏,既然设备没问题,我就会做成功的,哇哇...
我现在决定分离血管技术应该问题不大了,关键是我还不知道张力变化通过换能器在生理记录仪上记录的情况是什么?静息状态下是不是没有张力变化?滴去甲后血管收缩频率是多少?张力变化是不是类似氧合曲线啊?--先缓慢上升然后再出现平台期?还是收缩频率变快?我快周末的时候做过一次感觉是前者,又不知道是不是仪器基线的变化?因为有事就没有再试验过?cma1954 帮帮我啊
1.静息时没有变化。
2.加去甲后只有张力增加，不会出现节律性的收缩，因此也没有“收缩频率”。 3 1 2 3 下一页 尾页
应该不能用，因为做血管环平衡时要给1g左右的前负荷，你用的换能器量程是0.5g 的，超出其最大范围，况且在记录血管收缩时其张力也能超过0.5g , 应选5g至10g的换能器就可以了
不懂了现在,上次一位网上的朋友跟我说是张力传感器要求至少100mg,后来我问了实验室的老师,她说如果前负荷是1~2g的话,不可能要求这么精确的换能器,搞不懂了,做过大鼠主动脉环的朋友们帮帮我啊
本人做过血管环其实最好用螺旋环的，平衡时需要1g左右的前负荷，10克的换能器是比较好用的，5克的换能器确实是比较精确的，但人为操作很容易超过它的量程，很容易坏掉的。
螺旋环我做过一次,作起来太辛苦了.那我找得500mg的是什么意思啊?那老师说是美国产的,感觉像个天平,也就是说我得找个5~10g的换能器,刚跟实验室的老师说是100mg,他说做不到,就把我推给别的老师了,郁闷.
能不能把你的具体步骤发给我,
我的联系方法cucumberyo@163.com,QQ是75251907
你说的那种传感器应该是等张传感器，天平的一头接标本，另一头是一个可以动的砝码，移动砝码可确定前负荷，你的传感器的最大前负荷是500mg。等张换能器在记录仪上反映的是标本的长度变化，即位移（mm），而一般的张力换能器（等长换能器）反映的是标本的张力变化（mg、g），其他有关信息已PM给你。
用这种500mg等张传感器能不能做大鼠血管环啊？
可以，不知道你的配套记录仪是什么牌号的。等张换能器的使用是这样的：将砝码移到0刻度处，天平杠杆的另一头接上悬吊标本的丝线，调节传感器上下的位置，使天平两侧杠杆目测基本水平，将砝码调到你需要的前负荷处，比如500mg。至于调零和定标，你只能好好研究一下说明书了，因为，与张力换能器不同，不同牌号的等张换能器的调零、定标方法可能不一样。注意，等张换能器反映的是标本的长度变化，所以单位是mm。一般来说，等张换能器反映的标本舒缩状况，比张力换能器更接近生理状况，对于越细小的标本，比如小动脉、输尿管、输精管等等，这种优越性越突出。以前，一些张力换能器测不出的标本，等长换能器都能测出，但由于科技的发展，更灵敏的张力换能器出现，加上等张换能器使用比较麻烦，价格昂贵等因素，使用者越来越少。当然，新买高敏张力换能器有接插口能否与你的记录仪吻合，经费问题，时间问题 等等，你有等张换能器，不妨一试。
500mg的换能器比1g的换能器更灵敏在记录仪更能反央血管微小的活动状态，不过连接时注意动作要轻巧、调零调平衡时也要轻，平衡时也用500mg砝码，平衡时间稍长一些，作标本挂标本联接熟练后作起来很爽的。试验就是这样开始问题特多，作一段时间后就特别顺，作到劲头上了又作完了。
呜呜。。，老板很少问课题的问题，上次上门诊他提醒我不要超出预算，我都快绝望了，试验方法一个也不成熟，还没足够的经费，我想问一下如果不作我要测得酶的基因表达（原来准备作RT-PCR）,改作活性测定可不可以？我只是硕士，做的这么辛苦，想哭
我准备了一周时间,做了两次.没有成功.感觉就是血管好像没活性似的.问题很多,如下:
1我取下的血管放在冰水克氏液中,分离周围结缔组织的时候通的氧气,但总觉得是不是氧气不够,因为就是在平皿上放一管子通氧气,不知道这一步对不对?有别的方法吗?
2分离的血管是什么颜色?我分离的血管技术差,结缔组织太多,等我分离干净后,感觉是白色的有点透明,总觉得颜色太透明了,会不会分离过度了
3分离大鼠主动脉血管有什么技巧没?一开胸我就很紧张,生怕分离太慢血管没活性了
当然还是有一点收获就是做成7字形很方便,上面那个可以做成竖横折---不知道怎没表达,血管就不会移动了.用作介入的导丝韧性很好,也很光滑.
各位帮帮我吧,我分离血管这步实在是通不过阿
从你的步骤上看，应该没什么问题。标本放在近0°C的冰箱保存几小时还是有活性的。有几点供参考：
1.主动脉应该没有多少结缔组织，不必过于强求分离得多干净，因为药物的作用于血管内膜，因此，内膜不能有损伤，比如穿钩子时的划伤，即所谓“血管内皮的完整性”。
2.以最快的速度取下标本，投入冰克氏液漂洗，我想这个过程不到30s吧。
3.前负荷0.5~1g，37°C平衡1h。
4.克氏液应预先通氧1h以上。
5.标本平衡好后，浴槽内滴十万分之一的去甲肾上腺素数滴，标本应该出现收缩。这样的标本应该能使用几小时都有良好的活性。
标本保存的时候是要氧和的克氏液,我是用的两根管子一个通气一根排气,再放到冰箱里不知道可不可以?
放到冰克氏液血管就安全了吗?预先通氧是什么意思,毕竟分离血管要在平皿上,通一个小时的氧难道有用吗?我总觉得一个小管子通氧气,会不会造成缺氧血管没活性啊?
我今天做了一只,还是没有图形,仪器感觉还可以,灵敏度挺高的,总觉得问题还是出在血管本身上
1.预先通氧就是在放克时液的容器里通氧，使溶液中的氧饱和度增加。
2.放冰箱保存的标本不一定要在溶液中通氧。
3.分离标本时尽量避免用手拿。
4.最好通95%O2＋5%CO2，但气体价格较贵；80年代《云南医学院学报》有一篇文献，介绍用纯氧通气的克氏液配方，你可参考一下。
5.勤思多做。
谢谢.我已经决定停一下请教一下别人了,做的郁闷,但总会找到那个纰漏,既然设备没问题,我就会做成功的,哇哇...
我现在决定分离血管技术应该问题不大了,关键是我还不知道张力变化通过换能器在生理记录仪上记录的情况是什么?静息状态下是不是没有张力变化?滴去甲后血管收缩频率是多少?张力变化是不是类似氧合曲线啊?--先缓慢上升然后再出现平台期?还是收缩频率变快?我快周末的时候做过一次感觉是前者,又不知道是不是仪器基线的变化?因为有事就没有再试验过?cma1954 帮帮我啊
1.静息时没有变化。
2.加去甲后只有张力增加，不会出现节律性的收缩，因此也没有“收缩频率”。 3 1 2 3 下一页 尾页