初次接触血样处理的实验有许多问题不是很明白:
1、分离血浆时采集的血液要立即离心，还是静置一会再离心？有时候采样点不能一次性完成不会影响实验吧？
2、离心获得的血浆要立即放入冰箱中吗？由于采样的时间跨度在7个小时，这样之前分离的血浆要在室温条件下至少放置7个小时（实验的地方没有冰箱），这样可行吗？
3、怎样防止溶血现象?离心获得的血浆都是红色的，抽血时压力不是很大，将血液推入离心管时动作也很缓和（针头已经拔掉），为什么还有溶血现象？
4、-20℃保存的血浆可以保存多久?血浆怎样复溶？是放在室温下自然融化，还是要在一定的水浴温度下融化？
5、取空白血浆之前也要禁食吗？为什么？禁食多久？
6、血浆和血清样品必须要进行蛋白沉淀吗？有的说液液萃取不必进行蛋白沉淀，这种说法正确吗？
7、乙酸乙酯处理血浆，除能提取药物外还能融入血浆中的什么成分？用它提取药物，氮气吹干后再复溶发现离心管底部有些东西溶解不了， 这种情况该怎么办？会不会影响药物的复溶效果？
8、分离血浆用的肝素钠浓度一般是多大的？肝素钠中的水分对血浆样品有影响吗，什么影响？
9、走液相时，样品的色谱峰不是较光滑的线条而是波浪形的线条，这是怎么回事？是柱子的问题吗，怎样解决？
我权当是人类血样的处理哈，如果楼主问的是动物的话仅供参考。
1、分离血浆时采集的血液要立即离心，还是静置一会再离心？有时候采样点不能一次性完成不会影响实验吧？
血浆的离心方法根据试验的目的来定，操作流程按照分离管得说明书操作。
但是，务必保证所有的血样按照统一的规程进行操作，保证结果的可比性。
2、离心获得的血浆要立即放入冰箱中吗？由于采样的时间跨度在7个小时，这样之前分离的血浆要在室温条件下至少放置7个小时（实验的地方没有冰箱），这样可行吗？
获得的血浆尽量放入冷藏/冷冻的环境中，与你分析的目标化合物相关，需要进行方法验证，室温能放置多长时间，对结果测定影响如何，需要数据，有的也许需要马上冷冻，呵呵。
实在没有冰箱，尽量用冰盒来保证。
3、怎样防止溶血现象?离心获得的血浆都是红色的，抽血时压力不是很大，将血液推入离心管时动作也很缓和（针头已经拔掉），为什么还有溶血现象？
关于溶血的问题，很多因素会影响。如果你的样本很多都有溶血的话，需要找到原因。
取血的工具，取血的手法，取血的护士，离心前的放置，离心的参数设定，
4、-20℃保存的血浆可以保存多久?血浆怎样复溶？是放在室温下自然融化，还是要在一定的水浴温度下融化？
如果有-70℃的冰箱，也学更好。短期存贮的话，-20倒也可以。至于多长时间，需要数据，或者查查文献。
复融的话不妨室温，至于能够冻融几次，楼主可以考察一下。
另外，保险起见，可以分多管分别进行存贮，尽量减少复融次数。
5、取空白血浆之前也要禁食吗？为什么？禁食多久？
空血浆应当与样品同样对待。
原因是减少不必要的干扰和解释。
6、血浆和血清样品必须要进行蛋白沉淀吗？有的说液液萃取不必进行蛋白沉淀，这种说法正确吗？
蛋白质沉淀的目的很明显，如果后处理不影响分析，不毁柱子的话，倒也无所谓。
7、乙酸乙酯处理血浆，除能提取药物外还能融入血浆中的什么成分？用它提取药物，氮气吹干后再复溶发现离心管底部有些东西溶解不了， 这种情况该怎么办？会不会影响药物的复溶效果？
充分溶解后过滤吧。
其实这些和你的前处理有关，蛋白质沉淀、柱前处理等等，有机会解决这个问题。不过要考虑回收率之类的问题了。
8、分离血浆用的肝素钠浓度一般是多大的？肝素钠中的水分对血浆样品有影响吗，什么影响？
这个查下工具说吧，呵呵。
水分很大吗？
9、走液相时，样品的色谱峰不是较光滑的线条而是波浪形的线条，这是怎么回事？是柱子的问题吗，怎样解决？
色谱峰是波浪形的线条，你指的不是基线吗？
不排除柱子的问题，多冲洗几遍试试，包括所有流动相的线路。另外，还有检测波长，对于200左右的，很难走平啊，流动相、进样等等都有可能影响啊。
1、分离血浆时采集的血液要立即离心，还是静置一会再离心？有时候采样点不能一次性完成不会影响实验吧？
2、离心获得的血浆要立即放入冰箱中吗？由于采样的时间跨度在7个小时，这样之前分离的血浆要在室温条件下至少放置7个小时（实验的地方没有冰箱），这样可行吗？
3、怎样防止溶血现象?离心获得的血浆都是红色的，抽血时压力不是很大，将血液推入离心管时动作也很缓和（针头已经拔掉），为什么还有溶血现象？
4、-20℃保存的血浆可以保存多久?血浆怎样复溶？是放在室温下自然融化，还是要在一定的水浴温度下融化？
5、取空白血浆之前也要禁食吗？为什么？禁食多久？
6、血浆和血清样品必须要进行蛋白沉淀吗？有的说液液萃取不必进行蛋白沉淀，这种说法正确吗？
7、乙酸乙酯处理血浆，除能提取药物外还能融入血浆中的什么成分？用它提取药物，氮气吹干后再复溶发现离心管底部有些东西溶解不了， 这种情况该怎么办？会不会影响药物的复溶效果？
8、分离血浆用的肝素钠浓度一般是多大的？肝素钠中的水分对血浆样品有影响吗，什么影响？
9、走液相时，样品的色谱峰不是较光滑的线条而是波浪形的线条，这是怎么回事？是柱子的问题吗，怎样解决？
我权当是人类血样的处理哈，如果楼主问的是动物的话仅供参考。
1、分离血浆时采集的血液要立即离心，还是静置一会再离心？有时候采样点不能一次性完成不会影响实验吧？
血浆的离心方法根据试验的目的来定，操作流程按照分离管得说明书操作。
但是，务必保证所有的血样按照统一的规程进行操作，保证结果的可比性。
2、离心获得的血浆要立即放入冰箱中吗？由于采样的时间跨度在7个小时，这样之前分离的血浆要在室温条件下至少放置7个小时（实验的地方没有冰箱），这样可行吗？
获得的血浆尽量放入冷藏/冷冻的环境中，与你分析的目标化合物相关，需要进行方法验证，室温能放置多长时间，对结果测定影响如何，需要数据，有的也许需要马上冷冻，呵呵。
实在没有冰箱，尽量用冰盒来保证。
3、怎样防止溶血现象?离心获得的血浆都是红色的，抽血时压力不是很大，将血液推入离心管时动作也很缓和（针头已经拔掉），为什么还有溶血现象？
关于溶血的问题，很多因素会影响。如果你的样本很多都有溶血的话，需要找到原因。
取血的工具，取血的手法，取血的护士，离心前的放置，离心的参数设定，
4、-20℃保存的血浆可以保存多久?血浆怎样复溶？是放在室温下自然融化，还是要在一定的水浴温度下融化？
如果有-70℃的冰箱，也学更好。短期存贮的话，-20倒也可以。至于多长时间，需要数据，或者查查文献。
复融的话不妨室温，至于能够冻融几次，楼主可以考察一下。
另外，保险起见，可以分多管分别进行存贮，尽量减少复融次数。
5、取空白血浆之前也要禁食吗？为什么？禁食多久？
空血浆应当与样品同样对待。
原因是减少不必要的干扰和解释。
6、血浆和血清样品必须要进行蛋白沉淀吗？有的说液液萃取不必进行蛋白沉淀，这种说法正确吗？
蛋白质沉淀的目的很明显，如果后处理不影响分析，不毁柱子的话，倒也无所谓。
7、乙酸乙酯处理血浆，除能提取药物外还能融入血浆中的什么成分？用它提取药物，氮气吹干后再复溶发现离心管底部有些东西溶解不了， 这种情况该怎么办？会不会影响药物的复溶效果？
充分溶解后过滤吧。
其实这些和你的前处理有关，蛋白质沉淀、柱前处理等等，有机会解决这个问题。不过要考虑回收率之类的问题了。
8、分离血浆用的肝素钠浓度一般是多大的？肝素钠中的水分对血浆样品有影响吗，什么影响？
这个查下工具说吧，呵呵。
水分很大吗？
9、走液相时，样品的色谱峰不是较光滑的线条而是波浪形的线条，这是怎么回事？是柱子的问题吗，怎样解决？
色谱峰是波浪形的线条，你指的不是基线吗？
不排除柱子的问题，多冲洗几遍试试，包括所有流动相的线路。另外，还有检测波长，对于200左右的，很难走平啊，流动相、进样等等都有可能影响啊。