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在反相色谱柱上几乎不保留的成分怎么延长 其出峰时间呢?

时间: 2012-03-29 08:51:01 作者: 来源: 字号:
现在做一个东西,几乎在反相条件下不保留,保留时间为1min,怎么样才能延长他的保留时间呢?用氨基柱行吗




90%不行。




lwinna

您好,我看不到你的回复,我当时发问题的时候也不知道怎么就设了个限制。不好意思,麻烦您再发一次




还有就是用氨基柱是用正相条件呢?还是反相条件呢?




用ODS-AQ色谱柱或者用waters的T3柱试试,如果还不行,可以尝试HILLIC色谱柱。




我也看不到你的帖子,凭感觉回复下。曾经遇到一个C18柱上不保留的东西,用乙醇溶解,出峰时间比溶剂峰还早,最后加了点己烷磺酸钠,好一点了。




95%的水都不行




用纯水,配合我说的色谱柱,也可尝试缓冲体系。




使用正相试试看看

当然可先查查相关文献




谢谢诸位的建议,我这个是要去打液质的,所以不能加缓冲盐,另外ODS-AQ色谱柱等这些柱子我们这里都没有,郁闷,正打算试试正相系统,反相是不行的




做不下去了




这个东东是头孢他美酸,极性挺强的,在有机相中溶解性差,所以不能用正相系统,所以下面不知道该怎么做下去了,请各位老师前辈们指点一下吧




难道这种极性强的东西就没办法延长他的出峰时间吗?我知道的另外一个项目也是类似情况,遇到这种情况该怎么办呢?






谁说MS不能用缓冲盐的?一般是可以用挥发性的缓冲盐,比如乙酸铵等






溶解性差,可以使用混合溶剂

另外,看看文献就知道该怎么做了






正相系统不能连MS的啊,LC-MS系统中经常用乙酸铵缓冲液做流动相的啊,如果想解决问题就要尝试各种可能的办法,如果你不去试,怎么解决问题?





建立了血浆中头孢他美酸的HPLC测定方法并用于国产头孢他美特戊酯片的药动学研究。方法:采用10%的高氯酸溶液直接沉淀血浆中的蛋白,取上清液在HpersilODS2柱上分析,流动相为V(乙腈)∶V(水)∶V(三乙胺)∶V(冰乙酸)=125∶875∶10∶5,采用UV检测器,于265nm处检测。结果:头孢他美酸在0.1~20μg/mL范围内,峰面积与浓度线性关系良好(r=0.999991),最低可定量浓度为0.1μg/mL,绝对回收率>85%,日内和日间RSD均<10%。结论:该方法简易、准确,适用于头孢他美特戊酯片的药物动力学和生物利用度研究。

根据文献,应该能实现分离。

《RP-HPLC法测定人血浆中的头孢他美酸的浓度》广东药学院学报 2001 年17卷01期
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