各位老师,请教一个问题,最近我新装了一根葡聚糖凝胶柱,装完后用0.2mol/l的PBS压柱,以水溶液为流动相时,进0.1mg/ml的蓝色葡聚糖2000 200ul出了较大的峰,柱效也很好,在以0.1mol/L PBS为流动相时蓝色葡聚糖2000先是不出峰,后来重复进样后也只是出很小的峰,
这是怎么回事啊?
这么小的流速
是0.2mol/L的PBS Buffer solution
流速是1.5ml/min
不好意思
看错了
水相和缓冲液相的峰面积是差别大
差别大这个我是知道的
只是差别也太大了点,水相里面峰面积50000,缓冲液相里面不到1000,
以前做缓冲液相也有20000左右
这次是新的凝胶柱,不知道是不是压柱压得太紧了
最近还发现一个问题,水相里面蓝色葡聚糖2000有时候会出肩峰,不知道各位高手在做聚合物的过程中有没有遇到这样的问题,可以一起探讨下!
我的葡聚糖2000在以水为流动相柱子是G10凝胶柱,始终不出峰为什么啊
我这边也分析过头孢曲松聚合物,可是相比较之下曲松实在是太简单了,呵呵。比起青霉素和阿莫西林这个太简单了呵呵
聚合物流动相A的比例不是一定的么,那如何调节其pH值呢?
这是怎么回事啊?

这么小的流速
是0.2mol/L的PBS Buffer solution
流速是1.5ml/min
不好意思
看错了
水相和缓冲液相的峰面积是差别大
差别大这个我是知道的
只是差别也太大了点,水相里面峰面积50000,缓冲液相里面不到1000,
以前做缓冲液相也有20000左右
这次是新的凝胶柱,不知道是不是压柱压得太紧了
最近还发现一个问题,水相里面蓝色葡聚糖2000有时候会出肩峰,不知道各位高手在做聚合物的过程中有没有遇到这样的问题,可以一起探讨下!
我的葡聚糖2000在以水为流动相柱子是G10凝胶柱,始终不出峰为什么啊
我这边也分析过头孢曲松聚合物,可是相比较之下曲松实在是太简单了,呵呵。比起青霉素和阿莫西林这个太简单了呵呵
聚合物流动相A的比例不是一定的么,那如何调节其pH值呢?