我在分皂苷化合物，正向板上用正丁醇醋酸水4:1:2展开，可以看到两个紧紧挨在一起的两个点，但是用c18和c8柱子都没有分开，大家还有什么办法啊
换根正相色谱住 可以常试一下正相色谱系统进行分离
你是说液相吗 具体怎么用啊 指点
用哪种型号的柱子啊
你可以干法装硅胶柱，湿法上样，直接用你选用的展开剂跑柱试试，切柱分离。
用乙酸乙酯：甲醇：醋酸：水四相体系过柱子试试
你说用乙酸乙酯：甲醇：醋酸：水四相体系过柱子分离皂苷，具体比例是怎么样的呢，我用正丁醇：醋酸：水4：1：2展开的时候 Rf值0.2左右，
先定性看一下你的皂苷是甾体皂苷还是三萜皂苷.如果是甾体皂苷的话,最好别用醇类的跑板,很容易发生缩醛反应.跑出来以后都会显示两个点.
你可以在液相上看一下是几个峰,如果是甾体皂苷的话,建议用乙腈作流动相,用甲醇的话会反应,出现两个永远分不开的峰,因为样品一直在相互转变.
不知道对你有否帮助.
我的是三萜皂苷，求助啊？？？我到底该怎么分啊
你还有条件用反相，不错了，好好分吧
应该可以分开的C18，我前段时间也分过一个，但是很费劲就是。每针的时间非常长。
乙酸乙酯：甲醇：醋酸：水为4:2:1:2,呵呵
试一下吧!
试试大孔树脂
试试大孔树脂
大孔树脂？？真的假的，具体怎么样用呢
谈点我的经验:
(1)分离大极性的皂苷类化合物，最好别直接上硅胶柱，应该先用大孔树脂(最好是有三菱的SP树脂)划段，可以除去大部分的极性大的糖类成分，利于后续的分离纯化。
(2)一般过硅胶柱不会考虑用含正丁醇的洗脱相的，粘度大，流速太慢！也不好蒸啊！这样会用给人很少做植化的印象哟！
我的已经很纯净了，就两三个点，用反相c18，c8就是分不开的，大家都有什么好的建议呢？
为什么不用正相柱？效果不好吗？我也没做过，学习中！
用反相硅胶柱梯度洗脱一下，看能不能分开，拿到单点再上HPLC
反相柱不起作用，一点效果没有
只有两个点用凝胶试试，有时候正相硅胶也是能够分开的
我用凝胶不好用的，你是说我用正向色谱柱吗？ 自己装的正相硅胶柱，感觉得到一个比较纯的点 ，但是在正相板上点的浓点展开后发现前后都有谈谈的同系物
HPLC制备
晕，要是容易制备 ，我早制备了，反相柱的液相一点效果没有
那有没有试过多个多个展开剂，以及多个流动相，用DAD检测器（如果有紫外吸收的话），看看到底是不是不纯的，因为我曾经从书上看到过如果展开剂选择不合适的话单体也可以显示为多个点。希望对你有帮助
既然你能看到主斑点的前后有点的话，用梯度洗脱应该可以的。但你接馏分时一定要少，并且不能随意合并。我做皂苷是极性大的都是这么弄的
既然你能看到主斑点的前后有点的话，用梯度洗脱应该可以的。但你接馏分时一定要少，并且不能随意合并。我做皂苷是极性大的都是这么弄的